Русская Википедия:Бета-катенин

Материал из Онлайн справочника
Перейти к навигацииПерейти к поиску

Шаблон:Infobox protein family Бета-катенин, или β-катенин — это белок, участвующий в клеточной адгезии и в регуляции экспрессии генов. В клеточной адгезии бета-катенин выполняет свои функции, соединяя цитоплазматическую часть кадгерина с α-катенином и F-актином. При регуляции экспрессии генов бета-катенин выступает в качестве внутриклеточного передатчика сигнала в сигнальном пути Wnt, играющего важную роль в эмбриональном развитии и гомеостазе тканей[1][2]. Бета-катенин входит в семейство белков катенинов и гомологичен γ-катенину, также известному как плакоглобин. Бета-катенин у человека кодируется геном CTNNB1[3], у дрозофилы гомологичный белок называется armadillo[4][5]. Бета-катенин широко экспрессируется во многих тканях.

В сердечной мышце бета-катенин локализуется в адгезивных контактах, в структурах вставочных дисков, которые имеют решающее значение для электрического и механического взаимодействия между соседними кардиомиоцитами. Изменения локализации и уровня экспрессии бета-катенина были связаны с различными формами заболеваний сердца, включая дилатационную кардиомиопатию. Мутации и сверхэкспрессия β-катенина связаны со многими видами рака, включая лейкозы[6], гепатоцеллюлярную карциному, колоректальную карциному, рак легкого, злокачественные опухоли молочной железы, рак яичников и эндометрия[7].

Открытие

Первоначально бета-катенин был открыт в начале 1990-х годов как компонент комплекса клеточной адгезии млекопитающих. Тогда был открыт белок, отвечающий за цитоплазматическое прикрепление кадгеринов[8]. Однако очень скоро выяснилось, что белок дрозофилы armadillo, участвующий в опосредовании морфогенного действия Wingless/Wnt, гомологичен β-катенину млекопитающих не только по структуре, но и по функции[9].

Структура бета-катенина

Файл:Beta-catenin-structure.png
Упрощенная структура бета-катенина

Центральная часть бета-катенина состоит из нескольких очень характерных повторов, каждый из которых имеет длину около 40 аминокислотных остатков, складывающихся в три альфа-спирали. Все эти повторы, называемые повторами armadillo, складываются в единый жёсткий белковый домен вытянутой формы — так называемый домен armadillo (ARM). Первый armadillo-повтор β-катенина (вблизи N-конца) несколько отличается от остальных — он имеет вытянутую спираль с перегибом, образованным слиянием спиралей 1 и 2[10]. Из-за сложной формы отдельных повторов весь ARM-домен не является прямым стержнем: он обладает небольшой кривизной, так что образуется внешняя (выпуклая) и внутренняя (вогнутая) поверхность. Эта внутренняя поверхность служит местом связывания лигандов для различных партнёров по взаимодействию с доменами ARM.

Участки, расположенные на N- и C-конце домена ARM, сами по себе не имеют никакой структуры в растворе. Тем не менее, эти внутренне неупорядоченные участки играют важнейшую роль в функционировании бета-катенина. N-концевая неупорядоченная область содержит консервативный короткий линейный мотив, ответственный за связывание Е3-убиквитин-лигазы TrCP1 (известной также как β-TrCP) — но только в фосфорилированном состоянии. Таким образом, деградация β-катенина опосредуется этим N-концевым участком. С другой стороны, С-концевой участок является сильным трансактиватором при рекрутировании на ДНК. Этот участок не является полностью неупорядоченным: часть С-концевого удлинения образует стабильную спираль, которая прилегает к ARM-домену, но может связываться и с отдельными партнерами по связыванию[11]. Этот небольшой структурный элемент (HelixC) закрывает С-концевой конец ARM-домена, экранируя его гидрофобные остатки. HelixC не является необходимым для функционирования бета-катенина в клеточно-клеточной адгезии. С другой стороны, он необходим для сигнального пути Wnt: возможно, для рекрутирования различных коактиваторов, таких как 14-3-3zeta[12]. Однако его точные партнеры среди общих транскрипционных комплексов до сих пор не до конца понятны, и, вероятно, они включают тканеспецифичных игроков[13]. Примечательно, что С-концевой сегмент β-катенина может имитировать действие всего сигнального пути Wnt, если его искусственно соединить с ДНК-связывающим доменом транскрипционного фактора LEF1[14].

Плакоглобин, называемый также γ-катенином, имеет поразительно схожую архитектуру с бета-катенином. Не только их ARM-домены похожи друг на друга как по архитектуре, так и по способности связывать лиганд, но и N-концевой β-TrCP-связывающий мотив также консервативен в плакоглобине, что предполагает общее происхождение и общую регуляцию с β-катенином[15]. Однако плакоглобин является очень слабым трансактиватором при связывании с ДНК — это, вероятно, связано с расхождением их С-концевых последовательностей. Плакоглобин, по-видимому, не имеет трансактиваторных мотивов и, таким образом, ингибирует гены-мишени пути Wnt, а не активирует их[16].

Связывание партнеров через ARM-домен

Файл:Beta-catenin-ARM-domain-interactions.png
Партнеры, конкурирующие за связывание ARM-домена бета-катенина

ARM-домен бета-катенина выступает в качестве платформы, с которой могут связываться специфические линейные мотивы белков-партнёров бета-катенина. Расположенные в структурно разнообразных партнёрах, β-катенин-связывающие мотивы обычно не упорядочены сами по себе и, как правило, приобретают жёсткую структуру при связывании с ARM-доменом. Взаимодействующие с β-катенином мотивы обладают рядом особенностей. Во-первых, они могут достигать или даже превышать длину в 30 аминокислот и контактировать с ARM-доменом на большой площади. Другой необычной особенностью этих мотивов является часто высокая степень их фосфорилирования. Фосфорилирование серин-треониновых остатков значительно усиливают связывание многих β-катенин-связывающие мотивов с ARM-доменом[17].

Структура бета-катенина в комплексе с катенин-связывающим доменом транскрипционного трансактивационного партнера TCF является канонической схемой взаимодействия многих партнеров по связыванию бета-катенина[18]. Эта структура показала, как неупорядоченный N-концевой участок TCF адаптируется к, казалось бы, жёсткой конформации, при этом связывающий мотив охватывает множество повторов бета-катенина. Были определены относительно сильные «горячие точки» взаимодействия зарядов, предсказанные и впоследствии подтверждённые как консервативные для взаимодействия бета-катенин/кадгерин. Были определены также гидрофобные области, важные для связывания и являющимися потенциальными терапевтическими мишенями для малых молекул-ингибиторов против некоторых форм рака. Кроме того, последующие исследования продемонстрировали ещё одну особенность — пластичность связывания N-конца TCF с бета-катенином[19][20].

Аналогичным образом действует E-кадгерин, цитоплазматический хвост которого связывается с доменом ARM таким же каноническим образом[21]. Скаффолд-белок аксин, существующих в двух близкородстванных формах — аксин 1 и аксин 2, содержит аналогичный мотив взаимодействия на своем длинном неупорядоченном среднем сегменте[22]. Хотя одна молекула аксина содержит только один мотив привлечения β-катенина, его белок-партнер APC содержит 11 таких мотивов в тандемном расположении на один протомер, что позволяет ему взаимодействовать сразу с несколькими молекулами β-катенина[23]. Поскольку поверхность ARM-домена в каждый момент времени может вместить только один пептидный мотив, все эти белки конкурируют за один и тот же клеточный пул молекул β-катенина. Эта конкуренция является ключом к пониманию того, как работает сигнальный путь Wnt.

Однако этот «главный» сайт связывания на ARM-домене β-катенина далеко не единственный. Первые спирали ARM-домена образуют дополнительный, особый карман белок-белкового взаимодействия: в нём может размещаться спиралевидный линейный мотив, обнаруженный в коактиваторе BCL9, а также в близком к нему BCL9L, важном белке, участвующем в сигнальном пути Wnt[24]. Хотя точные детали гораздо менее ясны, похоже, что этот же участок используется альфа-катенином, когда бета-катенин локализован в адгезивных контактах[25]. Поскольку этот карман отличается от «основного» сайта связывания ARM-домена, конкуренции между альфа-катенином и E-кадгерином или между TCF1 и BCL9, соответственно, не возникает[26]. С другой стороны, BCL9 и BCL9L должны конкурировать с α-катенином за доступ к молекулам β-катенина[27].

Функция бета-катенина

Файл:Beta-catenin-destruction-complex.png
Схема комплекса белков, участвующих в фосфорилировании бета-катенина

Роль в каноническом сигнальном пути Wnt

Канонический сигнальный путь Wnt, также известный как Wnt/β-катениновый путь, включает ядерную транслокацию β-катенина и активацию им целевых генов через факторы транскрипции TCF/LEF. Канонический путь Wnt в основном контролирует клеточную пролиферацию. Отличительной особенностью Wnt-сигналинга является способность побуждать клетки к пролиферации, одновременно придавая форму растущим тканям[28]. Wnt-сигналинг играет важную роль в самообновлении некоторых тканей млекопитающих. Например, сигнальный путь Wnt связан с развитием и обновлением эпителиальной ткани тонкого кишечника и способствует дифференцировке клеток Панета в основании крипт. Кроме того, сигнальный путь Wnt тесно связан с метаболизмом и регенерацией печени, восстановлением и метаболизмом лёгочной ткани, обновлением волосяных фолликулов, развитием кроветворной системы, созреванием и активностью остеобластов[2].

Канонический сигнальный путь Wnt можно разделить на 4 этапа, каждый из которых относится к разным клеточным компартментам: внеклеточный этап, мембранный, цитоплазматический и ядерный этапы. Внеклеточные сигналы в основном опосредуются белками Wnt. В клеточной мембране сигнальный путь Wnt опосредуется комплексом из двух рецепторов: Frizzled (FZD) и LRP5/6. В цитоплазме Wnt-сигнал передаётся при помощи β-катенина, уровень которого зависит от убиквитинирования, которое в свою очередь определяется белками DVL, аксином и APC, а также активностью GSK-3 киназы и казеиновой киназы I-го типа (CKI). Ядерный этап Wnt-сигналинга состоит в том, что β-катенин транслоцируется из цитоплазмы в ядро и, действуя в в комплексе с факторами транскрипции семейства TCF/LEF, активирует свои гены-мишени[28].

Регуляция убиквитинирования бета-катенина через фосфорилирование

Клеточный уровень бета-катенина в основном контролируется его убиквитинированием и дальнейшей протеосомной деградацией. E3-убиквитин-лигаза TrCP1, известная также как β-TrCP, может распознавать β-катенин как свой субстрат благодаря короткому линейному мотиву на неупорядоченном N-конце бета-катенина. Однако для связывания β-TrCP этот мотив (Asp-Ser-Gly-Ile-His-Ser) β-катенина должен быть фосфорилирован по двум серинам. Фосфорилирование этого мотива осуществляется гликогенсинтазными киназами 3 альфа и бета (GSK3α и GSK3β). GSK3 являются конститутивно активными ферментами, участвующими в ряде важных регуляторных процессов. Однако есть одно требование: субстраты GSK3 должны быть предварительно фосфорилированы на четыре аминокислотных остатка ниже по направлению к С-концевой части. Таким образом, для активности GSK3 также необходима «праймирующая киназа». В случае бета-катенина наиболее важной праймирующей киназой является казеиновая киназа I-го типа (CKI). После того как субстрат, богатый серин-треониновыми аминокислотными остатками, фосфорилирован праймирующими киназами, GSK3 может «пройтись» по нему от С-конца к N-концу, фосфорилируя каждый 4-й остаток серина или треонина подряд. Этот процесс приводит к двойному фосфорилированию вышеупомянутого мотива узнавания β-TrCP.

Комплекс деградации бета-катенина

Для того, чтобы GSK3 киназа смогла фосфорилировать свои белки-субстраты, недостаточно только префосфорилирования. Существует ещё одно дополнительное требование: подобно митоген-активируемым протеинкиназам (MAPK), белки-субстраты должны связываться с GSK3 киназой через высокоаффинные стыковочные мотивы. Бета-катенин таких мотивов не содержит, зато их содержит специальный белок — аксин. Более того, мотив стыковки аксина с GSK3 непосредственно примыкает к мотиву связывания с β-катенином[22]. Таким образом, аксин выступает в роли белка-скаффолда, обеспечивая тесную физическую близость фермента GSK3 и её субстрата β-катенина.

Аксин действует не в одиночку. Через свой N-концевой домен регулятора G-белковой сигнализации (RGS) он рекрутирует белок аденоматозного полипоза APC. APC подобен огромной «новогодней ёлке», он обладает 11 мотивами связывания с β-катенином[23]. APC может взаимодействовать также с несколькими молекулами аксина одновременно, поскольку имеет три SAMP-мотива (Ser-Ala-Met-Pro) для связывания RGS-доменов, имеющихся в аксине. Аксин, в свою очередь, обладает способностью к олигомеризации благодаря своему С-концевому домену DIX. В результате образуется огромный мультимерный белковый комплекс, предназначенный для фосфорилирования β-катенина. Этот комплекс белков обычно называют комплексом деградации бета-катенина, однако он только маркирует молекулы β-катенина для последующего убиквитинирования и протеасомного разрушения[29].

Участие в сигнальном пути Wnt

Файл:Beta-catenin-moonlighting.png
Белковые комплексы, включающие β-катенин

В покоящихся клетках молекулы аксина олигомеризуются друг с другом через свои С-концевые DIX-домены, которые имеют два интерфейса связывания. Таким образом, они могут образовывать линейные олигомеры или даже полимеры в цитоплазме клеток. DIX-домены уникальны: единственные другие известные белки, имеющие DIX-домен, — Dishevelled и DIXDC1. Белок Dishevelled связывается с цитоплазматическими областями рецептора Frizzled с помощью своих доменов PDZ и DEP. Когда молекула Wnt связывается с рецептором Frizzled, она вызывает каскад событий, в результате которого раскрывается DIX-домен Dishevelled и создается идеальный сайт связывания для аксина. После связывания с рецепторным комплексом аксин становится некомпетентным для связывания β-катенина. Важно отметить, что цитоплазматические сегменты ассоциированных с Frizzled белков LRP5 и LRP6 содержат псевдосубстратные последовательности GSK3 (Pro-Pro-Pro-Ser-Pro-x-Ser), соответствующим образом «праймированные» (префосфорилированные) CKI, как если бы это был истинный субстрат GSK3. Эти ложные сайты-мишени значительно подавляют активность GSK3 конкурентным образом[30]. Таким образом, связанный с рецептором аксин перестает опосредовать фосфорилирование β-катенина. Поскольку бета-катенин больше не помечен для разрушения, но продолжает вырабатываться, его концентрация будет возрастать. Когда уровень β-катенина повысится настолько, что насытит все сайты связывания в цитоплазме, он также транслоцируется в ядро. Задействовав транскрипционные факторы EF1, TCF1, TCF2 или TCF3, β-катенин заставляет их отсоединиться от своих предыдущих партнеров: белков Groucho. В отличие от Groucho, которые рекрутируют транскрипционные репрессоры (например, гистон-лизиновые метилтрансферазы), бета-катенин связывает транскрипционные активаторы, тем самым включая свои гены-мишени.

Роль в межклеточной адгезии

Межклеточные адгезивные контакты, составной частью которых является бета-катенин, необходимы для формирования тканей животных, поддержания эпителиальных клеточных слоев и барьеров. β-катенин соединяется с цитоплазматической частью кадгерина и с α-катенином, α-катенин в свою очередь способен к связыванию с актиновыми филаментами (F-актином)[31]. Комплекс E-кадгерин/β-катенин/α-катенин образует слабые взаимодействия с F-актином в отсутствие внешней нагрузки. Приложение механической нагрузки значительно усиливает связывающие взаимодействия между кадгенрин-катениновым комплексом и F-актином[32].

Взаимодействия

Бета-катенин участвует в белок-белковых взаимодействиях с: Шаблон:Div col

Шаблон:Div col end


Литература

Примечания

Шаблон:Примечания

  1. Шаблон:Cite journal
  2. 2,0 2,1 Шаблон:Статья
  3. Шаблон:Cite journal
  4. Шаблон:Cite journal
  5. Шаблон:Cite journal
  6. Шаблон:Статья
  7. Шаблон:Cite journal
  8. Шаблон:Cite journal
  9. Шаблон:Cite journal
  10. Шаблон:Cite journal
  11. Шаблон:Cite journal
  12. Шаблон:Cite journal
  13. Шаблон:Cite journal
  14. Шаблон:Cite journal
  15. Шаблон:Cite journal
  16. Шаблон:Cite journal
  17. Шаблон:Cite journal
  18. Шаблон:Cite journal
  19. Шаблон:Cite journal
  20. Шаблон:Cite journal
  21. 21,0 21,1 Шаблон:Cite journal
  22. 22,0 22,1 Шаблон:Cite journal
  23. 23,0 23,1 Шаблон:Cite journal
  24. Шаблон:Cite journal
  25. Шаблон:Cite journal
  26. Шаблон:Cite journal
  27. Шаблон:Cite journal
  28. 28,0 28,1 Шаблон:Статья
  29. Шаблон:Cite journal
  30. Шаблон:Cite journal
  31. Шаблон:Cite journal
  32. Шаблон:Статья
  33. Шаблон:Cite journal
  34. 34,0 34,1 34,2 34,3 Шаблон:Cite journal
  35. Шаблон:Cite journal
  36. 36,0 36,1 Шаблон:Cite journal
  37. Шаблон:Cite journal
  38. Шаблон:Cite journal
  39. Шаблон:Cite journal
  40. Шаблон:Cite journal
  41. Шаблон:Cite journal
  42. Шаблон:Cite journal
  43. Шаблон:Cite journal
  44. Шаблон:Cite journal
  45. Шаблон:Cite journal
  46. Шаблон:Cite journal
  47. 47,0 47,1 Шаблон:Cite journal
  48. Шаблон:Cite journal
  49. Шаблон:Cite journal
  50. Шаблон:Cite journal
  51. 51,0 51,1 Шаблон:Cite journal
  52. Шаблон:Cite journal
  53. Шаблон:Cite journal
  54. Шаблон:Cite journal
  55. 55,0 55,1 55,2 55,3 Шаблон:Cite journal
  56. 56,0 56,1 56,2 Шаблон:Cite journal
  57. 57,0 57,1 Шаблон:Cite journal
  58. Шаблон:Cite journal
  59. 59,0 59,1 Шаблон:Cite journal
  60. 60,0 60,1 Шаблон:Cite journal
  61. Шаблон:Cite journal
  62. Шаблон:Cite journal
  63. Шаблон:Cite journal
  64. 64,0 64,1 Шаблон:Cite journal
  65. 65,0 65,1 Шаблон:Cite journal
  66. Шаблон:Cite journal
  67. Шаблон:Cite journal
  68. Шаблон:Cite journal
  69. 69,0 69,1 Шаблон:Cite journal
  70. Шаблон:Cite journal
  71. Шаблон:Cite journal
  72. Шаблон:Cite journal
  73. Шаблон:Cite journal
  74. 74,0 74,1 Шаблон:Cite journal
  75. Шаблон:Cite journal
  76. Шаблон:Cite journal
  77. Шаблон:Cite journal
  78. 78,0 78,1 Шаблон:Cite journal
  79. Шаблон:Cite journal
  80. Шаблон:Cite journal
  81. Шаблон:Cite journal
  82. Шаблон:Cite journal
  83. Шаблон:Cite journal
  84. Шаблон:Cite journal
  85. 85,0 85,1 Шаблон:Cite journal
  86. Шаблон:Cite journal
  87. Шаблон:Cite journal
  88. Шаблон:Cite journal
  89. Шаблон:Cite journal
  90. Шаблон:Cite journal
  91. Шаблон:Cite journal
  92. Шаблон:Cite journal
  93. Шаблон:Cite journal
  94. Шаблон:Cite journal
  95. Шаблон:Cite journal
  96. Шаблон:Cite journal
  97. Шаблон:Cite journal
  98. Шаблон:Cite journal
  99. Шаблон:Cite journal
  100. Шаблон:Cite journal
  101. Шаблон:Cite journal
  102. Шаблон:Cite journal
  103. Шаблон:Cite journal
  104. Шаблон:Cite journal
  105. Шаблон:Cite journal
  106. Шаблон:Cite journal
  107. Шаблон:Cite journal
  108. Шаблон:Cite journal
  109. Шаблон:Cite journal
  110. Шаблон:Cite journal
  111. Шаблон:Cite journal
  112. Шаблон:Cite journal
  113. Шаблон:Cite journal
  114. Шаблон:Cite journal
  115. Шаблон:Cite journal